|
|
|
Veterinaria Tropical. 22(2): 171-187.
1997
FAUNA PARASITARIA EN TlLAPIAS DEL LAGO DE
VALENCIA
Walkiria
Aragort F.*, Edgar León A.*,
Ana T. Guillén*, Maglene Silva** y Carmen Balestrini**
* Investigadores. FONAIAP. Centro Nacional de Investigaciones
Agropecuarias.
Instituto de Investigaciones Veterinarias. Apdo. 70. Maracay 2101. Venezuela. * * Técnicos Asociados a la Investigación. FONAIAP. Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias. Instituto de Investigaciones Veterinarias. Apdo. 70. Maracay 2101. Venezuela. Recibido: junio 12, 1997 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
RESUMEN
Se realizaron nueve
muestreos en horas de la mañana, desde marzo de 1994 hasta febrero de 1995, en
la región noreste del Lago, capturando y analizando 82 ejemplares de tilapia,
Oreochromis mossamblcus, especie que resultó dominante. Se encontraron
dos formas parasitarias: un trematodo monogenésico a nivel de los lamelos
branquiales y metacercarias de un trematodo digenésico a nivel del globo ocular,
Diplostomum compactum. Estas últimas presentaron una prevalencia del
100% y una abundancia de nueve parásitos por pez. Los resultados del test
no-paramétrico de Kruskal-Wallis revelan que los peces de mayor peso y longitud
presentaban las mayores cargas parasitarias, no teniendo esto influencia sobre
los parámetros hemáticos, los cuales estuvieron dentro de los rangos normales;
además, el 50% de las muestras analizadas presentaron contaminación por
organoclorados.
Palabras Clave:
Tilapia; trematodo monogenésico;
Diplostomum; peces.
INTRODUCCIÓN
Los estudios sobre las
parasitosis de los peces son esenciales para lograr desarrollar una acuacultura
de excelencia. Sin embargo, las investigaciones sobre parásitosis en peces han
estado dirigidas principalmente hacia aspectos como la descripción taxonómica de
los vermes y no hacia la relación parásito-hospedador, la interpretación
epidemiológica de las parasitosis, las alteraciones patológicas y las pérdidas
económicas que ocasionan.
En Venezuela esta
información es de primordial interés para el desarrollo de estrategias de
prevención y control de esas enfermedades con el objeto de lograr asi un
adecuado desarrollo ictiosanitario de los centros agrícolas que se están
iniciando en el país.
Por lo anterior, se hace
necesario desarrollar investigaciones sobre la fauna parasitaria que pudiera
afectar la producción y productividad de los peces de interés comercial, tanto
en los cuerpos de agua naturales como en los artificiales ya que desde los año,
70, al identificarse el cultivo de peces en Venezuela, se han originado
epizoótias en algunas estaciones de cultivo.
El Lago de Valencia es un
cuerpo de agua expuesto a un fuerte proceso de contaminación como consecuencia
del débi1 recambio de agua y el contacto directo con las actividades humanas e
industriales desarrolladas en sus márgenes. A pesar de este proceso y la
prohibición por parte de Ministerio de Ambiente se observa que en el Lago de
Va1encia se pesca, no obstante, de manera sistemática y se sacan a la venta
grandes cantidades de carne de pescado para consumo humano.
El objetivo de esta
investigación fue conocer las especies de peces que mayormente se capturan en el
Lago de Va1encia y la fauna parasitaria que en ellos se encuentra.
MATERIALES Y MÉTODOS
El Lago de Va1encia se
encuentra situado en el centro norte de Venezuela, intercalado intercalado entre
el ramal de la costa y el ramal del interior de la cordillera central
aproximadamente entre los 67° 36' y 67° 53' de longitud oeste, 10° 06' y 10" 16'
de latitud norte y su hoya abarca territorialmente parte de los estados Aragua
y Carabobo (LUENGO, 1963; NUÑEZ y WEIBEZAHN,1986).
Según PEETERS (1971), el
nivel del Lago es de 405 m.s.n.m. y según BOCKH (1956) el are de la cuenca es de
2646 km, excluyendo la superficie del Lago. El área del Lago es de 350
km2; la profundidad media 18,0 m, la profundidad máxima 39,0 m y el
volumen 6,3 km3 (WEIZBEZAHN, 1971).
El estudio se realizó en
la región noreste del Lago en el sitio denominado La Cabrera, dado que allí se
facilitó el muestreo.
Se efectuaron nueve
muestreos, todos en horas de la mañana, utilizando redes. Los muestreos se
realizaron en el Lago de Valencia desde marzo 1994 hasta febrero
1995.
Se determinó la calidad
del agua analizando: temperatura (°C), pH y oxígeno disuelto.
Los peces capturados se
colocaron en bolsas plásticas aireadas a una densidad baja y fueron tratados con
clorhidrato de oxitetraciclina para evitar el ataque bacteriano durante el
transporte. Los peces permanecieron en acuarios aireados hasta su procesamiento.
Técnica de
procesamiento de cada pez
Se tomaron medidas de
peso y longitud a 82 peces y luego se les extrajo sangre de la vena caudal, con
jeringa hepilrinizada para la determinación de valores de hematocrito,
hemoglobina y frotis sanguíneo, así como la obtención de la fórmula leucocitaria
y detección de hemoparásitos.
Fue realizado un
cuidadoso examen de la superficie externa de cada pez con el fin de observar y
anotar la presencia de cualquier anormalidad visible macroscópicamente. En este
sentido, se verificó la coloración del cuerpo, posible presencia de exoftalmia,
erizamiento o pérdida de escamas, congestión, hinchamiento y necrosis de las
aletas y erosión de los bordes de los opérculos (FAO, FCV -UCV, 1987).
Se tomaron muestras de
piel con bisturí por medio de raspado, para observarlas al microscopio. Los
peces fueron seccionados en la región abdominal para la extracción de los
órganos, separando los opérculos para extraer los arcos branquiales; también se
seccionó alrededor de los ojos para obtenerlos intactos.
Las muestras de cada
órgano se colocaron, por separado, en cápsulas de Petri con agua para
observarlas bajo lupa estereoscópica.
Se observaron muestras de
tejido y frotis fresco a través del microscopio para detectar la presencia de
vermes de menor tamaño. Adicionalmente se realizó análisis toxicológico
(organofosforados y organoclorados) a las vísceras y piel de 12
peces.
Preparación del
material helmintológico
Se efectuó en dos
etapas:
Colección
Los helmintos fueron
separados del tejido con un pincel o una aguja de disección y colocados sobre
una lámina con una gota de agua obtenida del medio acuático donde se encontraba
el pez, cubriéndose luego el material con una laminilla a fin de observarlo como
preparado fresco. Se tomaron fotografías de los especímenes hallados.
Fijación
Se trabajó con parásitos
vivos, los cuales fueron extraídos y colocados en agua limpia con la finalidad
de eliminar la mucosidad. Luego fueron colocados en láminas porta-objeto con una
gota de agua y al estar completamente distendidos se cubrieron con laminilla,
fijándolos por aproximadamente dos horas con alcohol al 70%. Los parásitos se
desprendieron de las láminas y se almacenaron en frascos con suficiente fijador.
Posteriormente fueron dibujados con ayuda de una cámara clara.
Valores y
comparaciones
Se determinaron valores
de carga parasitaria total; relación carga parasitaria total con peso y talla de
los peces; comparación de los valores de hematócrito y hemoglobina en peces
infectados; igualmente, prevalencia y abundancia de acuerdo a las definiciones
de MARGOLIS el a/. (1982) y MORALES y PINO DE MORALES (1987).
Los datos obtenidos en
las diferentes observaciones fueron analizados mediante pruebas estadísticas no
paramétricas.
Se aplicó la prueba no
paramétrica de análisis de varianza de KruskalWallis (SIEGEL, 1982; MORALES y
PINO de MORALES, 1987).
Exámenes
hematológicos
La determinación del
hematócrito se realizó mediante la técnica de microhematócrito. Adicionalmente,
se observó el color del plasma registrándose cualquier variación de su
característica tonalidad amarillenta pálida (COLES, 1968; JAIN, N. C,
1993).
La hemoglobina fue
determinada por el método de cianometa hemoglobina (FAO, 1987).
Exámenes
toxicológicos
Las muestras de piel y
vísceras de peces fueron examinadas en el Laboratorio de Control de Productos
del Instituto de Investigaciones Veterinarias, donde se realizaron las pruebas
para determinar la presencia de organofosforados y organoclorados.
RESULTADOS Y
DISCUSIÓN
Se analizaron 82 peces,
colectados durante nueve muestreos, registrando los valores de cargas
parasitarias encontrados en tilapia Oreochromis mossambicus, pez exótico,
perteneciente a la familia Cichlidae, ya que fue la especie que se
capturó durante el período de la investigación.
El el año 1959 se
importaron las primeras tilapias, procedentes de Trinidad, las cuales fueron
sembradas en cuerpos de agua del centro y sur del país, utilizándose
principalmente como peces forrajeros para otras especies ictiófagas (CAPECCI,
1994). La introducción de este pez al Lago de Valencia, sin haber tomado en
cuenta el impacto ecológico que podía causar, sumado a la creciente
contaminación del agua ya la elevada densidad poblacional en sus márgenes, es el
que posiblemente ha originado la disminución drástica de la diversidad íctica,
que para el año de 1963 era de 37 especies, de las cuales 7 presentaban carácter
endémico (LUENGO, 1963).
Del análisis
físico-químico del agua se obtuvieron los siguientes resultados: la temperatura
promedio fue de 27,3 °C, el oxígeno disuelto de 3,5 mg/1 y el pH de 8,6, valores
que son adecuados para el establecimiento de especies ícticas.
Hallazgos
Parasitológicos
Trematodo
branquial
Un trematodo monogenésico
fue localizado a nivel de lame los branquiales en sólo uno de los peces
capturados (Figura la). En él se destacan, en la región del pro-haptor, cuatro
puntos cefálicos, un par anterior poco visible y un par posterior más separado y
de mayor tamaño; las glándulas de fijación y el órgano copulador. En la región
del opisto-haptor se ubican los ganchos de fijación (Figura la y lb). Su tamaño
fue de 394m
de largo y 133m
de ancho.
Los trabajos
realizados por BUNKLEY-WILLIAMS y WILLIAMS (1994), señalan que Cichlidogyrus
tilapiae es el único parásito branquial detectado en lamelos branquia1es de
todas las especies de tilapias de los centros de cultivo de Puerto Rico. Así
mismo, THATCHER (1991) indica que dos especies de trematodos C. sclerosus
y C. tilapiae son parásitos branquiales de Tilapia mossambica; por
último, PAPERNA (1996) refiere que los monogeneos son hospedadores específicos y
parecen haber evolucionado con su hospedador. Las mismas especies de parásitos,
sin embargo, infestan con frecuencia varias especies de peces del mismo género y
los parásitos que infestan a un hospedador de una misma familia de peces
usualmente se relacionan taxonómicamente, a nivel de género como es el caso de
los Cichlidogyrus y la familia Cichlidae. Sobre lo antes expuesto
inferimos que el trematode encontrado pertenece al género Cichlidogyrus.
Según FLORES-CRESPO
et al. (1992), cuando las parasitosis son elevadas, los peces presentan
asfixia, intranquilidad y se agrupan en la entrada de agua, buscando
alivio.
En Venezuela se ha
señalado la presencia de estos trematodos branquiales en la especie Colossoma
macropomum (cachama), causando mortalidad en alevines y reproductores
sometidos a cultivo (MUJICA Y ARMAS DE CONROY, 1985; ARAGORT Y MORENO
1997).
Diplostomum
compactum
En todos los peces se
observaron metacercarias de Diplostomum compactum a nivel del globo
ocular; las cuales fueron aisladas, fotografiadas en fresco (Figura 2a) y
dibujadas en cámara clara (Figura 2b).
El ciclo de vida de
D. compactum (LUTZ, 1928, citado por OSTROWSKY, 1982) fue completamente
elucidado en 1970 en el Lago de Valencia. El caracol Biomphalaria
prona, endémico en el Lago se demostró que era el primer hospedador
intermediario natural. Las cercarias penetran principalmente el ojo de la
tilapia del Lago, también se encontró que pueden infestar, aunque por menor
tiempo, el ojo del Geophagus sp. Lebisles reticulatus. El
hospedador definitivo es el cormoran, Phalacrocorax olivaceus (OSTROWSKI, M.
1982).
HOFFMAN y HOYNE, citados
por ROBERTS (1989), realizaron trabajos experimentales de neuropatología en los
teleósteos, en cuanto a la patogénesis de la lesión causada por el trematodo
Diploslomum baerieucaliae en el cerebro de la especie espinoso de arroyo
(Eucalia inconslans). Cercarias de este parásito atraviesan la piel y
llegan al cerebro a través de los tejidos o la sangre, localizándose en las
meninges, específicamente en la sustancia blanca del lóbulo óptico y en el
cristalino. Esto produce una gran lesión en el tejido sin afectar las funciones
nerviosas, pero cuando la infestación es importante, el curso es fatal debido a
las profusas hemorragias que se producen.
Los especímenes
estudiados no presentaron ninguna lesión externa o cambio en el comportamiento
ocasionado por los parásitos a nivel del globo ocular. Sin embargo, en algunas
especies de peces producen cataratas bilaterales (ASHTON el al., 1969). En los
peces capturados se observaron, a simple vista, metacercarias móviles de D.
compactum las cuales le daban alojo una apariencia opaca. Observaciones
similares han sido descritas por ASHTON el al. (1969) y THATCHER (1991) en peces
de aguas cálidas; ALBERT y CURTIS (1991) y BRASSARD el al. (1982) en la
trucha Salvelinus fontinalis .
Prevalencia y
abundancia
En relación a los valores
encontrados, las metacercarias de D. compactum es la especie parásita
principal debido a que se observaron en todos los los peces muestreados,
obteniéndose un 100% de prevalencia. Resultados similares fueron reseñadas por
ALBERT Y CURTIS (1991) en la especie S. fonlinalis, con una prevalencia
entre 98% y 100%.
La abundancia se mantuvo
constante durante los meses en que se realizaron las capturas, con valores
promedios cercanos a nueve.
Estudios realizados en
Oreochromis aureus y O. mossambicus, del Lago Amela, en
México, indican que el 55% de estos peces son parasitados por metacercarias
de D. compactum ubicándose en el humor acuoso y vitreo del ojo; estas
metacercarias causaron edema en la córnea, conjuntivitis, neuritis del nervio
óptico, eosinofilia del iris y uveítis (GARCIA M. L. et al.,
1993).
Variación de las
cargas parasitarias en el tiempo
Los muestreos fueron
realizados tanto en época de sequía como en época de lluvia, no encontrándose
diferencias significativas en los valores de cargas parasitarias asociados a
cambios climáticos, al aplicar pruebas estadísticas no paramétricas, ya que las
poblaciones de parásitos se distribuyen siguiendo una binomial negativa;
diversos autores han demostrado que ese es el tipo de distribución que
generalmente presentan los parásitos en las poblaciones de hospedadores (MORALES
y PINO de MORALES, 1987). No obstante, algunos investigadores han observado, en
otras latitudes, variaciones estacionales en las cargas parasitarias,
encontrando aumento de las mismas entre junio y agosto (ALBERT y CURTIS, 1991).
Comparación de
carga parasitaria con peso y longitud de los peces
Al aplicar el test de
Kruskal-Wallis, se observó que los peces de mayor peso y longitud exhibían las
mayores cargas parasitarias, encontrando diferencias altamente significativas
(P<=O,O5). Los valores oscilaron entre 1 y 17 parásitos por pez (Cuadro 1).
Esto posiblemente se deba a que peces más grandes presentan una mayor superficie
de tejido propensa a ser parasitada. Resultados similares fueron encontrados en
los parásitos Diplectanum aequans, D. laubieri (SILAN y MAILLARD, 1990) y
Dactylogynls sp (FLORES-CRESPO et al., 1992), en los que se
encontró una asociación positiva entre edad y carga parasitaria para especies de
trematodos monogenésicos.
Parámetros
hemáticos
No se observó la
presencia dehemoparásitos en las muestras analizadas.
Al aplicar el test de
Kruskal-Wallis, no se encontraron diferencias significativas entre los valores
de hematócrito asociados a las cargas parasitarias en el globo ocular (Cuadro 1)
.Muestras de sangre de doce peces fueron sometidas a un contaje diferencial de
células blancas (fórmula leucocitaria), observando tres tipos de células:
linfocitos (91,6% ), monocitos (7,2%) y segmentados neutrófilos (1,2%) (Cuadro
2). Estos resultados coinciden con los encontrados por SILVEIRA y RIGORES (1989)
en la especie de tilapia, O. aureus, en la que apreciaron que las células
predominantes eran los linfocitos, siguiendo los monocitos y luego los
segmentados. Otros autores (EZZAT et al., 1974, citados por SILVEIRA y
RIGORES, 1989) observaron tendencias similares en Tilapia zilli,
planteando que los valores porcentuales de las diferentes células no tienen una
explicación clara, por no estar definida la función exacta de cada tipo de
leucocito en los peces.
En relación con los
valores de medianas encontrados para hematocrito y hemoglobina, éstos coinciden
con los señalados como normales para 0. aureus bajo cultivo por SILVEIRA
y RIGORES (1989) y BADAWI y SAID (1971), citados por SILVEIRA y RIGORES,
1989) (Cuadro 3), pudiéndose inferir que las tilapias del Lago de
Valencia (0. mossambicus) poseen parámetros hemáticos normales, a pesar
de la hemorragia producida por las cercarias al atravesar la piel así como al
proceso de contaminación que tiene dicho cuerpo de agua.
Análisis
toxicológicos
Se realizó determinación
de organofosforados y organoclorados en piel y vísceras de doce peces. En el
50% de las muestras se evidenció contaminación por organoclorados, tanto en piel
como en vísceras. Sólo una muestra resultó positiva a organofosforado. Esto se
debe a la serie de insecticidas usados para el control de plagas en siembras en
las riberas del Lago.
Por otra parte, estas
sustancias químicas se utilizan como desparasitantes en ciertas especies de
peces y como control de plagas en estaciones de cultivo. Esto pudiera explicar
la baja diversidad de la fauna parasitaria, ya que dichos agentes tóxicos
impiden la sobrevivencia de ciertos agentes patógenos como los parásitos.
CONCLUSIONES
AGRADECIMIENTO
Al Fondo Nacional de
Investigaciones Agropecuarias, Instituto de Investigaciones Veterinarias y a
FUNDACITE -Aragua por haber hecho posible la realización de este
trabajo.
SUMMARY
The purpose of this
research was to know which species are catched and how parasited are them. Nine
sampling were performed, from March 1994 to February 1995 all the sampling were
in the moming. 82 tilapias, Oreochromis mossambicus, were captured. Two
parasite species were founded. One of them was a monogenetic trematode from gill
filament and the other was a digenetic trematode from the the eye
(Diplostomum campactum). The prevalence was 100% and the abundance was
9 parasite/fish. The non-parametric test (Kruskal-Wallis) was applied and it was
found that fish with high weight and size, butden higher amount of parasites.
This had not influence on hematic parameters, which were ot normal levels. The
50% of fish were contaminated with organochlorine.
Key Words:
Tilapia; monogenetic trematode;
Displostomum; fish.
BIBLIOGRAFÍA
ALBERT, E. and M. A. CURTIS. 1991. Prevalence and abundance of
helminth parasites in an intensively fished population of brook trout
(Salvelinus fontinalis) at a small subartic lake. Can.J. Zool.
69:691-697.
ARAGORT, W. C. y L. G. DE MORENO. 1997. Indices epidemiológicos de
trematodos monogenésicos en branquias de Colossoma macropomum, bajo
cultivo. Acta Biol. Venez., Vol. (17):1-8
ASHTON, N., N. BROWN and D. EASTY. 1969. Trematode cataract in
freswater fish. J. Sm. Animal Pract. 10: 471-478.
BOCKH, A. 1956. El desecamiento del Lago de Valencia. Caracas,
Fundación Eugenio Mendoza. 246 p.
BRASSARD, P., M. A. CURTIS and M. E. RAU. 1982. Seasonality of
Diplostomum spathaceum (Trematoda: Strigeidae) transmission to brook
trout (Salvelinus fontinalis) in northern Quebec, Canada. Can.J .Zool.
60: 2.258-2263.
BUNKLEY-WILLIAMS, L. and E. H. WILLIAMS. 1991. Parasites of Puerto
Rican freshwater sport fishes. Sportfish Disease Proyect. Deparment of Marine
Sciences. University of Puerto Rico. 164 p.
CAPECCI, M. F. 1994. Algunos aspectos relacionados al cultivo de la
cachama y tilapia. II. Taller sobre peces de aguas cálidas. FONAIAP-Portuguesa.
Centro de Cooperación Tecnológica de las Universidades y Sector Productivo.
Convenio FEDEAGRO-CECOTUP-FCA. s.p.
COLES, E. H. 1968. Patología y diagnóstico veterinarios. México.
Editorial Interamericana S.A. 400 p.
FAO -FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS -UCV. 1987. Curso sobre
ampliación de conocimientos sobre ictiopatología. Técnicas de fijación y
coloración para el estudio de parásitos en peces (protozoos/metazoos). Maracay,
Ven. 33 p. (mimeo).
FLORES-CRESPO, J., F. IBARRA., R. FLORES-CRESPO y C. G. VASQUEZ.
1992. Variación estacional de Dactilogyrus sp. en dos localidades
productoras de tilapia del Estado de Morelos. Técnica Pecuaria en
México.30(2):109-118.
GARCIA M. J., S. D. OSORIO y F. CONSTANTINO. 1993. Prevalencia de
los parásitos y las alteraciones histológicas que producen a las tilapias de la
Laguna de Amela, Tecomán, Colina. Veterinaria México 24(3):199-204.
JAIN, N. C.1993. Essentials of Veterinary hematology. Philadelphia.
Lea & Febiger. 417 p.
LUENGO, J. A. 1963. La fauna ictiológica del Lago de Valencia
(Venezuela) y algunas consideraciones sobre las demás hoyas del país y Trinidad.
Acta Biol. Venez. 3:319-339.
MARGOLIS, L., G. W. ESCH, J. C. HOLMES, A. M. KURIS and G. A.
SCHAD. 1982. The use of ecological termes in parasitology (Report of an ad
hoc committee of the American Society of Parasitologists). J.Parasitol.
68(1):131-133.
MORALES, G. A. y L. A. PINO DE MORALES. 1987. Parasitología
cuantitativa. Caracas. Fondo Editorial Acta Científica Venezolana. 132
p.
MUJICA, M. E. y G. A. de CONROY. 1985. Una trematodosis en
Colosoma macropomum (Cuvier 1818), bajo condiciones de cultivo. Rev.
Fac. Ciens. Vets. U.C.V. (Maracay, Ven.) 32 (1-4):103-111.
NUÑEZ, J. M. y F. WEIBEZAHN. 1986. Repartición de recursos
alimentarios entre dos especies de peces sub-litorales, Aequidens pulcher
(Gill) y Geophagus surinamensis (Block) en el Lago de Valencia. Acta
Biol. Venez. 12(2):24-33.
OSTROWSKI de NUÑEZ, M. 1982. Die Entwicklungszyklen von
Diplostomum (Austrodiplostomum) compactum (Lutz, 1928)
Dubois, 1970 und D.(A) mordax (Szidat und Nani, 1951) n. comb. in
Suramerica. Zool. Anz., Jena 2085/6, S. 393-404.
PAPERNA, I. 1996. Parasites, infections and diseases of fishes in
Africa. FAO. Cifa Technical, paper 31.220 p.
ROBERTS, R. J. 1989. Fish pathology. 2th edition. Bailliere
Tindall. 467 p.
PEETERS, L. 1971. Nuevos datos acerca de la evolución de la cuenca
del Lago de Valencia (Venezuela) durante el Pleistoceno Superior y el Holoceno.
Valencia, Ven. Inst. para la Conserv. del Lago de Valencia. 38 p.
SIEGEL, S. 1982. Estadística no paramétrica, aplicada a la ciencia
de la conducta. México. Editorial Trillas. 344 p.
SILAN, P. and C. MAILLARD.1990. Comparative structures and dynamics
of some population of helminths, parasites of fishes: the sea bass Diplectanum
model. Acta Oecologica 11(6):857-874.
SILVEIRA. R y C. RIGORES. 1989. Características hematologicas
normales de Oreochromis aureus en cultivo. Rev.Lat. Acui. 39: 55-68.
THATCHER. V. E. 1991. Amazon fish parasites. Institutode pesquisas
da Amazonia. Manaus, Amazona,. Brasil 571 p.
WEIBEZAHN.F H. 1971 Lago de Valencia In: H Luther
y J Rzoska, eds. Project Aqua. Oxford. Blackwell, I.B.P. Haudbook N° 21. 239
p.
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
|
|
Veterinaria Tropical >
Colección > Sumario > Volumen
22 > Articulo
|
No hay comentarios:
Publicar un comentario